基因操作指南

2025-11-10

病毒及基因治疗实验室操作指南

(分子生物学部分)

菌种保存

700μl 菌液加入等体积60%甘油,-20℃或-70℃保存。 甘油菌复苏、培养

方法一:挑取甘油菌一环,接种在含有相应浓度抗生素的LB固体培养基上(活化菌种),

37℃培养过夜(约12~16小时)。选取单独菌落转接在含有相应抗生素的LB

液体培养基中,37℃振摇过夜(约12~16小时)。

方法二:直接吸取10~20μl 甘油菌,接种在含有相应抗生素的LB液体培养基中,37℃振摇过夜(约12~16小时)。 小规模制备质粒DNA(QIA Miniprep Kit Protocol)

适于从1~5ml 菌液中制备20μg、小于10Kb的高拷贝质粒。 (1) (2) (3) (4)

溶液EB放置于37℃孵箱内,预热;

用Ep管收集菌液,10,000 rpm ,离心1min,弃上清; 加入250μl 溶液P1(含RNase),重悬细菌;

加入250μl 溶液P2,轻轻颠倒4~6次混匀,室温下静止2~3分钟(不可超

过5分钟,以免过度消化);

(5) 加入350μl溶液N3,迅速颠倒4~6次混匀,1,3000 rpm 离心10分钟; (6) 上清入QIAprep柱,1,3000 rpm离心30~60秒,滤液弃之; (7) 加入500μl 溶液PB洗柱,1,3000rpm 离心30~60秒;

(8) 加入750μl 溶液PE洗柱,1,3000rpm 离心30~60秒,弃滤液,再次离心1分钟,以去除残存的PE;

(9) 换新Ep管,加入37℃预热的溶液EB,37℃孵箱内静置1分钟(若质粒较大

可适当延长时间),1,3000 rpm 离心1分钟,-20℃或-70℃冻存备用。

手工方法小规模制备质粒DNA

(1) 将菌液装于Ep管内,用台式离心机10,000rpm离心1min,回收细菌; (2) 加溶液I 200μ(l溶液I成分:50mM葡萄糖,25mM Tris-HCl pH8.0,10mM

EDTA),振荡,重悬细菌; (3) 加溶液II 200μl(溶液II成分:0.2N NaOH,1%SDS),盖严管盖,颠倒4~

5次,混匀,静置3~4分钟。在PH12.0-12.6碱性环境中,线性的大分子量细

菌染色体DNA变性,再将PH调至中性,在有高浓度溶液存在的环境下,染色体DNA之间发生交联,形成不溶性网状结构,大部分基因组DNA和蛋白质在去垢剂的作用下形成沉淀);

1

(4) 加溶液III 200μ(溶液lIII成分:5mM KAc 60ml,冰醋酸11.5ml,水28.5ml),迅速颠倒5~6次,冰浴10分钟,1,3000rpm,离心10分钟,取上清;

(5) 加等体积酚:氯仿:异戊醇(V/V=25:24:1),混匀呈白色悬浊液,1,3000rpm

离心5分钟,取上层水相(注意:切勿将酚相与水相之间的白色物质吸起),移入新管; (6) 加入70%体积的异丙醇(约400μl),1,3000rpm离心10分钟,弃上清; (7) 加入70%酒精1ml,充分混合,漂洗沉淀,1,3000rpm离心1分钟,弃上清; (8) 再次6,000rpm离心1分钟,将残存的酒精吸尽;

(9) 将沉淀干燥至无色透明状,加入预热的EB溶液30~50μl,再加入RNase (工

作浓度20μg/ml), 37℃孵箱内放置30分钟,-20℃保存备用。

酶切反应

(1)体系构成

a) 反应体系应尽可能的小;

b) 酶切缓冲液为整个反应体系的十分之一,本实验室所用酶多为NEB公司产品,具体的缓冲液选择方案,应参照该公司使用说明;

c) 内切酶用量为反应体系的十至二十分之一(若为双酶切,则两种酶的总量占

总反应体系的十至二十分之一),酶的用量过大可能反而不利于酶切(因为内切酶中含有甘油); d) DNA总量不宜大于2-3μg,否则在进行琼脂糖凝胶电泳时,会产生拖尾现象; (2)37℃水浴1~2小时(或过夜,以求酶切彻底); (3)10μl 电泳观察酶切是否完全; (4)65℃水浴15分钟,灭活内切酶; (5)-20℃保存备用。

QIAquick 胶回收试剂盒使用说明

(1) 切胶(尽可能地去除多余的胶),称重; (2) 加入缓冲液QG,300μl/100mg胶,>2%的胶应加大QG用量至600μl/100mg; (3) 56℃水浴放置10分钟,每2-3分钟摇匀一次,使胶完全溶解,胶完全溶解颜

色为黄色、匀质溶液; (4) 当DNA片段大小为<500bp或>4Kb时,应加入异丙醇100μl/100mg胶,以

提高产量,此步不离心。DNA片段在500bp~4Kb时,加入异丙醇并不能提高产量;

(5) 结合:将以上混合物转入QIAquick柱(柱容量750μl),离心 1,3000rpm 1min; (6) 洗柱:加0.75ml缓冲液PE,1,3000rpm离心1分钟(注意:用于盐敏感操作时,如平端连接、直接测序等,加入PE后应静置2~5分钟); (7) 弃离心液,再次1,3000rpm离心1分钟,以去除残余的乙醇;

(8) 将QIAquick柱置于一新的1.5ml Ep管上,滴30~50μl经预热的缓冲液EB

或水于QIAquick柱滤膜中央,静置1分钟,1,4000rpm离心1分钟,所得片

段直接用于连接或-20℃保存备用。

2

连接反应

(1) 体系构成(适用于粘端连接)

a) 总反应体系为20μl;

b) 载体与目的片段摩尔数比为1:3~5;

c) T4 Ligase Buffer 2μl(占总反应体系的1/10); d) T4 Ligase 1μl(占总反应体系的1/20); e) 载体用量应为0.1μg左右,不宜过高。

(2) 反应条件:16℃水浴放置12~16小时(过夜)。 (3) 反应产物直接用于转化或~20℃保存备用。

感受态细胞的制备

(1) 甘油菌种10~20μl加入5ml LB液体培养基(无抗生素)中,37℃振摇4~6小时,至菌液呈稍微浑浊状(中对数期);

(2) 菌液冰浴10分钟,分装至两个Ep管内,4℃ 4,000~6,000 rpm离心3~5分钟,收菌;

(3) 弃上清,轻轻重悬细菌于800μl冰预冷的0.1M CaCl2中,冰浴10分钟,4℃

4,000~6,000 rpm离心3~5分钟,收菌; (4) 再将细菌轻轻重悬于50μl冰预冷的0.1M CaCl2中,冰浴,12~24小时可用。

注意: 若用0.1M CaCl2的10%甘油溶液重悬细菌,则可将该感受态细胞保存

于-80℃深低温冰箱内3~6个月,而转化效率不会有明显的下降。

PCR(聚合酶链反应)

(1) 反应体系共25μl,其中:

a)模板为:菌液3μl、病毒液5μl或抽提的质粒DNA 0.5~1μl;

b)引物各0.5μl; c)dNTP 0.5μl; d)10×Buffer 2.5μl;

e)若Buffer中不含MgCl2,则应加PCR专用的MgCl2溶液1.5μl; f)Taq 酶0.5μl;

g)加入Milli Q 水,补齐至25μl。 (2) PCR参数:

a)95℃ 5 min; b)94℃ 30Sec; c)50℃ 30Sec;

20~35个循环 d)72℃ 90 Sec; e)72℃ 链延伸 10min; f)4℃ 保存

g)降温幅度为0.75℃/Sec。

注意:以上反应条件只适用于一般的PCR,若结果不理想,应适当优化。

3

大量制备质粒DNA(传统碱裂解法、PEG8000纯化)

适用于从100~250ml菌液中制备100~250μg高拷贝质粒

(1) 涂板,挑取单克隆菌落,加入LB选择性培养基中,37℃振摇8小时,取适量

菌液(1/500~1/1,000)加入LB选择性培养基中(高拷贝质粒用100~250ml,低拷贝用500ml),37℃ 振摇12~16小时; (2) 收获菌液(用50ml离心管):4℃ 5,000rpm离心10min,弃上清,再次离心2min

吸除残留的培养液;(注意:次步可将离心沉淀后的菌斑-20℃冻存12~24

小时,留待以后操作); (3) 以10ml溶液I重悬细菌;

(4) 加10ml溶液II,轻轻旋转,颠倒4~6次(不可过重,以免机械剪切基因组DNA),

室温放置5min(不可超过5min,避免过度消化);

(5) 加入冰预冷的溶液III 10ml,迅速颠倒4~6次混匀,冰上放置20min,以促进

沉淀形成; (6) 4℃ 1,3000rpm(2,000g以上)离心30min,离心前应再次混匀样品;

(7) 上清入新管,4℃ 1,3000rpm(2,000g以上)再次离心15min,充分去除沉淀; (8) 上清入新管,加入60%体积的异丙醇(室温,以避免增加盐沉淀),混匀,室

温放置10min,4℃ 1,5000rpm离心30min(离心前应于管底作好标记),小心、缓慢地倒出上清,切勿将管底的DNA沉淀一并弃去; (9) 清洗:70%乙醇20ml清洗沉淀物,4℃ 1,5000g离心10min,小心、缓慢地倒

出上清,充分凉干,溶于0.1×TE溶液3ml中; (10) 加入等体积(3ml)冰预冷的5M LiCl溶液,充分混匀,4℃ 10,000rpm 离心10min;

(11) 上清入新管,加入等体积(3ml)异丙醇沉淀,室温条件下,以1,000rpm离心10min,

弃尽上清,以70%酒精清洗后,凉干,溶于0.1×TE溶液500~1,000μl中,分装Ep/500μl;

(12) 加入RNase(20μg/ml),室温放置30min;

(13) 加入含13%(w/v)PEG8000的1.6M NaCl 溶液500μl,充分混匀,室温静置

20min,4℃ 12,000rpm离心5min,回收沉淀的质粒DNA;

(14) 弃上清,以400μl 0.1×TE溶液溶解质粒DNA,用等体积的酚:氯仿(200μl:

200μl)和氯仿(400μl)各抽提一次,水相入新管(氯仿中加入异戊醇可起

到去除泡沫的作用,有利于防止吸出水相与酚相之间的白色物质);

(15) 加入1/10体积(40μl)3M的醋酸钾溶液,充分混合,加入2倍体积(800μl)的冰预冷的无水乙醇,冰上放置10min,4℃ 12,000rpm离心5min,回收质粒DNA;

(16) 弃上清,加入4℃预冷的70%酒精200μl,稍加振荡,4℃ 12,000rpm 离心5min,

重复该步骤3次;

(17) 吸除上清,敞开管口,室温凉干; (18) 以适量LoTE(pH8.0)溶解沉淀;

(19) 紫外分光光度计定量,琼脂糖凝胶电泳,酶切鉴定。

注意:每个需弃去上清的步骤都应小心地将其装入另一个新管内,以便于当实验不成功时查找原因及补救。

4

病毒DNA-QIAGEN试剂盒抽提指南

(1) 取200μl含病毒的细胞悬液入1.5ml离心管,或107培养细胞以PBS悬浮,

不够200μl时以PBS调节;

(2) 加20μl QIAGEN蛋白酶K(PK)储备液和200μl缓冲液AL,Vortex混匀; (3) 56℃孵育10min;

(4) 4,000rpm短暂离心,去除管壁及管盖上的液体;

(5) 加200μl无水乙醇,Vortex混匀15sec,再次4,000rpm短暂离心,去除管壁

上的液体; (6) 溶液入QIAGEN柱,8,000rpm离心1min;

(7) 弃滤液,加入500μl缓冲液AW1,8,000rpm离心1min; (8) 弃滤液,加入500μl缓冲液AW2,14,000rpm离心3min;

(9) 弃滤液,14,000rpm再次离心1min,弃2ml收集管; (10) 置QIAGEN柱于一洁净的1.5ml Ep管中,于滤膜中央滴加56℃预热的缓冲液AE 50μl,室温条件下静止1min(必要时于56℃热浴5min); (11) 14,000rpm 离心1min,弃QIAGEN柱。 转 化 (1) 感受态细胞50μl,加入2~5μl连接产物,轻弹Ep管底部混合,冰浴30~

60分钟; (2) 42℃热休克90秒,勿摇动试管,再冰浴2分钟;

(3) 加入LB液体培养基(无抗生素)200μl,37℃温和振摇45~60分钟; (4) 铺相应抗性的LB平板(平板要37℃预热),平放20分钟,37℃倒置培养10~

14小时。 Linker的合成 引物各10μl(25μm)加入PCR管中,混匀,置于PCR仪内,按以下程序进行合成: (1) 96℃变性5min;

(2) 以0.01℃/sec的速度降温至72℃,停留5min; (3) 以0.01℃/sec的速度降温至55℃,停留5min; (4) 以0.01℃/sec的速度降温至4℃,备用。 Linker的酶促磷酸化

反应体系:

合成的非磷酸化Linker 10μl 10×激酶缓冲液 10Mm ATP溶液 T4 PNK 100×BSA溶液 Milli Q H2O

5

2.0μl 2.0μl 1.0μl

4.0μl(40μg) 5.0μl

37℃温育1小时,产物可直接用于连接反应。

QIAGEN中样和大样质粒提取试剂盒操作步骤

(1) 取甘油菌10μl,接种于LB含抗生素的选择性液体培养基中。高拷贝质粒接种

于25ml(中样)或100ml(大样)培养基中,低拷贝质粒接种于100ml(中样)或500ml(大样)培养基中,37℃振摇过夜,约12~16小时; (2) 用50ml离心管收集菌液,4℃离心6,000g×15min,弃上清;

(3) 加4ml(中样)或10ml(大样)溶液P1(含RNase)重悬细菌,振荡混匀; (4) 加4ml(中样)或10ml(大样)溶液P2,轻轻颠倒4~6次混匀,室温孵育

5min; (5) 加4ml(中样)或10ml(大样)预冷的溶液P3,迅速轻轻颠倒4~6次混匀,

冰浴15min或20min;

(6) 4℃离心20,000g×30min,将含有质粒DNA的上清移入新管;

(7) 4℃再次离心20,000g×15min,上清移入新管;

(8) 以4ml(中样)或10ml(大样)溶液QBT分别平衡QIAGEN-tip 100或QIAGEN-tip 500柱,让液体自然流尽;

(9) 将含有质粒DNA的上清加入QIAGEN-tip柱中,让液体自然流尽; (10) 以2×10ml(中样)或2×30ml(大样)溶液QC洗柱; (11) 加5ml(中样)或15ml(大样)溶液QF,洗脱质粒DNA;

(12) 加3.5ml(中样)或10.5ml(大样)异丙醇,混匀,沉淀质粒DNA; (13) 4℃离心15,000g×30min,小心移去上清;

(14) 加2ml(中样)或5ml(大样)70%酒精,洗涤质粒DNA;

(15) 4℃离心15,000g×10min,小心移去上清;

(16) 室温干燥5~10min至沉淀透明,加溶液EB或TE pH8.0适量(50~100μl)

溶解质粒DNA,-20℃保存备用。

6


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